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SUMMARY:Exposition : "Cell Immersion"
DESCRIPTION:Les Bassins des Lumières – Imp. Brown de Colstoun\, Bordeaux \n\nCell Immersion vous convie à un voyage Art & Science dans un monde microscopique méconnu : l’humain. \nL’œuvre est la première brique d’un projet d’envergure\, nommé Cell Worlds\, qui amène les images de microscopie là où elles ne sont jamais allées. Loin des laboratoires et des disques durs des scientifiques et au plus près des cellules humaines. Ici\, tout est bien réel\, et surtout vivant. Chaque visuel de l’exposition se compose de véritables cellules : de l’électrisant neurone au fragile embryon en passant par les mélancoliques flux sanguins du cerveau. Découvrez un univers aux couleurs chatoyantes et d’une diversité incroyable. \nCell Immersion est une première mondiale scientifique\, mettant en scène le vivant microscopique dans des proportions jamais tentées. C’est également un des plus grands showcases de la recherche scientifique\, regroupant de nombreuses équipes\, laboratoires et instituts du monde entier. Une preuve que la science et l’art n’ont pas de frontières. \nÀ travers l’émerveillement\, ce voyage saura éveiller votre curiosité scientifique. Au-delà du simple divertissement\, Cell Immersion vous invite à vous reconnecter avec le monde vivant microscopique qui est aujourd’hui trop inconnu\, trop peu contemplé et parfois trop mystifié. \n  \n\nRéalisation : Terence Saulnier et Renaud Pourpre \nComposition de la bande originale : Youenn Lerb \n– \nEntrée gratuite dans la limite des places disponibles\nPasse vaccinal et masque obligatoires \n\n  \nPour plus d’informations : https://www.bassins-lumieres.com/fr/cell-immersion \n
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LOCATION:Les Bassins des Lumières\, Imp. Brown de Colstoun\, Bordeaux\, 33000\, France
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SUMMARY:Exposition d’aquarelles par Lorena Delgado Zabalza
DESCRIPTION:\nLorena Delgado Zabalza\, post-doctorante dans l’équipe « Dopamine et assemblées neuronales » dirigée par Jerôme Baufreton et François Georges\, exposera ses aquarelles à partir du mercredi 9 novembre 2022\, jusqu’au 25 novembre. \nLes membres de l’IMN ont déjà pu admirer ton travail à l’occasion du symposium de l’institut. \nL’aquarelle originale de l’oeuvre ci-contre sera bientôt exposée au Musée des Sciences de Navarre en Espagne dans le cadre d’une exposition Art et Science : un regard féminin.\nVoici le lien: https://sciencemuseum.unav.edu/activities/science-weeks/exposicion-arte-y-ciencia-una-mirada-femenina \n\n
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SUMMARY:Cajal Lectures - Neuroepigenetics : writing\, reading and erasing the epigenome
DESCRIPTION:Venue: CGFB \nFree entry lectures \n\nNovember 21 – 11:00am\nKarine Merienne (University of Strasbourg\, France)\nEpigenetic gene reprogramming in Huntington’s disease. \nNovember 22 – 6:00pm (Virtual talk)\nElisabeth Heller (University of Pennsylvania\, USA)\nEpigenetic editing for the study of reward pathophysiology. \nNovember 25 – 9:00am (Virtual talk)\nElisabeth Binder (Max Planck Institute of Psychiatry\, Germany)\nEpigenetic embedding of adverse life events. \nNovember 25 – 9:45am (Virtual talk)\nDiagenode : Presentation \nNovember 26 – 9:00am\nOlivia Engmann (Friedrich Schiller University Jena\, Germany)\nReversing chronic stress effects through life-style interventions. \nNovember 28 – 9:00am \nActive Motif : Presentation \nDecember 1 – 9:00am\nAngel Barco (Neurosciences Institute UMH-CSIC\, Spain)\nEpigenetic etiology of intellectual disability. \n December 2 – 9:00am\nAnne-Laurence Boutillier (University of Strasbourg\, France)\nAcetylation dysregulations in hippocampal neurons in Alzheimer’s disease: are we looking at the right culprit ? \nDecember 5 – 9:00am\nBartek Wilczynski (Institute of Informatics\, University of Warsaw\, Poland)\nUsing Machine Learning techniques to understand and classify epigenomic marks on promoters and enhancers. \nDecember 6 – 9:00am\nAleksandra Pekowska (Dioscuri Center of Chromatin Biology andEpigenomics\, Poland)\nMolecular signature of astrocyte evolution in primates. \nDecember 7 – 9:00am Denes Hnisz (Max Planck Institute for Molecular Genetics\, Germany)\nTranscriptional condensates in health and disease. \nDecember 7 – 5:30pm Johannes Graff (EPFL\, Switzerland)\nEpigenetic priming of memory formation. \nDecember 8 – 9:00am Gonçalo Castelo Branco (Karolinska Institute\, Sweden)\nOligodendroglia during development and disease: insights from single-cell and spatial epigenomics. \n  \n
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SUMMARY:Soutenance de thèse - Tom Delaire
DESCRIPTION:Lieu : Module 2.4 bât CROUS 2ème étage \nPlan d’accès \n\nSoutenance en anglais \nTom Delaire\nDirecteur de thèse : Jean-Baptiste Sibarita (IINS) \nTitre\nImagerie 3D haut-débit du développement d’organoïdes par imagerie soSPIM  (3D high-content screening of spheroids development using soSPIM) \nRésumé\nAu cours des dernières décennies\, les cultures cellulaires 3D sont devenues une référence pour les essais de médicaments et la mesure de toxicité. Elles englobent un large éventail d’échantillons\, allant des sphéroïdes dérivés d’une seule lignée cellulaire\, jusqu’aux organoïdes formés à partir de cellules souches qui se développent en structures multicellulaires semblables à des organes\, reproduisant toute ou partie de la morphologie et des fonctions des organes humains. L’étude du développement de ces cultures est particulièrement intéressante du fait qu’elles imitent fidèlement les comportements observés in vivo\, contrairement à leurs homologues 2D encore massivement utilisés aujourd’hui. Elles pourraient également permettre de réduire le nombre d’expériences effectuées sur des animaux qui est un sujet de nombreux débats d’éthiques. Pour y parvenir\, le développement d’outils expérimentaux capables de les étudier est encore nécessaire. C’est le cas du criblage haut-débit\, une méthode s’appuyant sur l’étude automatisée d’un important nombre d’échantillons\, dont l’utilisation dans le cadre de cultures 3D nécessite de relever les défis suivants : i) standardiser et paralléliser la culture d’échantillons 3D\, tout en minimisant leurs manipulations; ii) intégrer des méthodes de microscopie 3D rapides et peu invasives pour suivre l’évolution d’un grand nombre d’échantillons dans le temps\, tout en préservant leur intégrité biologique ; iii) être compatible avec les protocoles de criblage haut-débit dans le but de générer rapidement un grand nombre de données statistiques pour en extraire les informations pertinentes ; iv) intégrer des outils informatiques dédiés\, nécessaires à l’analyse phénotypique de la masse de données générées. \nPour atteindre ces objectifs\, notre équipe\, en collaboration avec le MechanoBiology Institute de Singapour\, a développé un système de microscopie à feuille de lumière à objectif unique\, appelée soSPIM. Cette méthode d’imagerie repose sur des dispositifs micro-fabriqués composés de micromiroirs orientés à 45° permettant de créer une feuille de lumière perpendiculaire à l’axe optique du microscope\, et de collecter la fluorescence avec le même objectif. Cette architecture\, compatible avec n’importe quel microscope inversé\, supprime les contraintes mécaniques des microscopes à feuille de lumière standards multi-objectifs. De nouveaux dispositifs comprenant des microcavités en forme de pyramides tronquées\, appelés JeWells\, ont récemment été mis au point. Ils permettent de paralléliser et de standardiser la culture et l’imagerie soSPIM de centaines d’échantillons 3D dans un seul dispositif. \nMon projet de thèse s’inscrit dans le cadre du développement d’une plateforme innovante de criblage à haut débit de cultures cellulaires 3D en utilisant la technologie soSPIM. J’ai dans un premier temps développé des outils et des protocoles pour automatiser le processus d’acquisition\, ainsi que pour faciliter la prise en main de l’instrument. J’ai en particulier développé un logiciel de repositionnement automatique\, permettant de stabiliser et paralléliser le criblage 3D d’échantillons sur plusieurs jours. Dans un second temps\, j’ai implémenté différentes méthodes d’amélioration des images soSPIM\, telles que l’imagerie multi-vues\, la déconvolution ou le sectionnement optique par illumination structurée\, dans le but d’optimiser la qualité des images obtenues et d’améliorer les performances des algorithmes de quantification. \nMots clés : Microscopie à feuille de lumière\, Cultures cellulaires 3D\, Criblage haut-débit\, Imagerie 3D\, Déconvolution\, Imagerie multi-vues\, Sectionnement optique par illumination structurée \nPublication\nA. Beghin\, G. Grenci\, G. Sahni\, S. Guo\, H. Rajendiran\, T. Delaire\, S. Binte Mohamad Raffi\, D. Blanc\, R. de Mets\, H.T. Ong\, X. Galindo\, A. Monet\, V. Acharya\, V. Racine\, F. Levet\, R. Galland\, J.B. Sibarita\, V. Viasnoff\, Nature Methods\, 2022 \nJury\n\nJean-Baptiste Sibarita (directeur de thèse) – IINS\, Bordeaux\, France\nVirgile Viasnoff (co-directeur de thèse) – MBI\, Singapour\, Singapour\nCorinne Lorenzo – Restore-Lab\, Toulouse\, France (rapporteure)\nAlexandra Fragola  – ESPCI\, Paris\, France  (rapporteure)\nPierre-François Lenne – IBDM\, Marseille\, France\nGaelle Recher  – LP2N\, Talence\, France\n\n
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SUMMARY:Clinical neuroanatomy seminar - Angeliki Zarkali
DESCRIPTION:\nOn Youtube and Zoom \n\nTitle\nFinding the network balance in Parkinson’s hallucinations \n\nDr Angeliki Zarkali\nhttps://twitter.com/Angelika_Za \nAbout CNSeminars\nwww.clinicalneuroanatomyseminars \n\n
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